以下のプレプリントをbioRxivで公開しました。九州大学の沼田先生、ポーランドのヤギェウォ大学の東佑翼先生との共同研究になります。 H. Li, Ł. Koziej, O. Kikko, K. Ishihara, T. Kagawa, K. Tajima, H. Shigematsu, C. Gerle, T. Matsuura, T. Numata, Y. Azuma, N. Terasaka†. Polymorphic Structures of an Artificial Nucleocapsid Evolved from a Circularly Permuted Bacterial Protein Cage. bioRxiv (2026) 分子自己集合は、サイズと形状が規定されたナノスケール構造を得るための有効な手法となります。反復するサブユニットから組み立てられたタンパク質ケージは、様々な分子を封入可能なコンパートメントを形成します。アミノ酸置換によってサブユニット間相互作用やケージ構造が変化し得るものの、タンパク質主鎖の連結性が

生命理工学院生命理工コース博士課程のStephen Coffeyさんが研究室に加わりました。ELSIの松浦教授との共同指導となります。

東京大学大学院工学系研究科の古林博士・野地博行教授との共著論文がACS Synthetic Biology誌に掲載されました。 T. Furubayashi, N. Terasaka, K. Tajima, H. Noji. Boosted cell-free gene expression for robust signal readout from a single-copy DNA template in microdroplets. ACS Synth. Biol. (2026) マイクロコンパートメントにおける無細胞遺伝子発現は、バイオテクノロジーおよび合成生物学の基盤となっています。コンパートメントあたり1コピーを含む低濃度のDNAからのタンパク質合成は、生体分子や合成細胞のin vitro進化に不可欠です。しかし、通常サブピコモルレベルのDNA投入量ではタンパク質の収量が不十分であり、その結果、信号が検出不能になったり、目的とするタンパク質機能の活性が不十分になったりします。そこで本研究では、低濃度のDNA投入下における再構成型in

古川晴之博士が筆頭著者、寺坂特任准教授が責任著者の論文がACS Synthetic Biology誌に掲載されました。 H. Furukawa, Y. Okamoto, N. Terasaka†. Artificial initiation codons and engineered initiator tRNAs enable N-terminal noncanonical amino acid incorporation in intact cell-free translation systems. ACS Synth. Biol. (2026) タンパク質のN末端へ非標準アミノ酸（ncAA）を導入することで、タンパク質への特定の機能付与が可能となります。しかし、既報のncAA導入システムは一般的に天然のメチオニンの翻訳導入を阻害するため、内部にメチオニン残基を含むタンパク質への応用が制限されていました。そこで我々は、天然のメチオニン導入系を維持しつつ、無細胞翻訳系においてN末端へのncAA導入を行うための直交的な開始システムを開発しました

博士研究員の野地真広博士が2026年6月17日から19日まで鳥取県で開催された第26回日本蛋白質科学会年会 で若手奨励賞を受賞しました！ https://www.elsi.jp/news_events/news/2026/masahiro-noji_pssj_award/

ELSI藤島准教授と共同している伊藤昇平さん（博士後期課程３年）が2026年6月4日と5日に開催されたDROPLET2026で審査員賞を受賞しました。 伊藤さんは「再構成型無細胞タンパク質合成系と極小ドロップレットを用いたアセチルCoAカルボキシラーゼ活性の検出 」というタイトルのポスター発表で受賞しました。 https://www.elsi.jp/news_events/news/2026/shoei-ito_droplet_award/

田島研也博士が筆頭著者、寺坂特任准教授が責任著者の論文がACS Synthetic Biology誌に掲載されました。 K. Tajima, Y. Sakai, N. Terasaka†. Cargo-directed assembly of nonviral nucleocapsid with controlled size. ACS Synth. Biol. 15(3) 1178–1186 (2026) 特定のサイズと形状を持つ自己集合性タンパク質ケージ内に多様な荷物を精密に封入することは、多くのバイオテクノロジー応用において不可欠ですが、細胞内発現ではその封入を制御することが困難でした。今回の研究では、分割型人工ヌクレオカプシド（spNC-4）を用いた、in vitroでの荷物指向型再構成システムを開発しました。2つのspNC-4キャプシドタンパク質サブユニットを個別に調製し、それらを協調的に組み合わせて荷物を封入させました。ヌクレオカプシドmRNAをin vitroで30 nmの球状ヌクレオカプシドに封入したところ、細胞内で発現したsp

寺坂特任准教授が共同筆頭著者である論文がProceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America誌に掲載されました。 M. D. Levasseur*, N. Terasaka*, A. Steinauer, S. Tetter, S, Pfister, B. H. Meier, D. Hilvert. An engineered closed-shell, two-component, 480-subunit nucleocapsid. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 123(22), e2530090123 (2026) https://www.pnas.org/doi/10.1073/pnas.2530090123 ウイルスカプシドや細菌のマイクロコンパートメントなどの天然のタンパク質シェルは、機能性分子を保護・送達する合成コンパートメントの設計に向けた取り組みの手がかりとなってきました。本研究では、非ウイルス性の、人

以下のプレプリントをbioRxivに公開しました。生命創成探求センター・分子科学研究所の岡本泰典准教授との共同研究になります。 H. Furukawa, Y. Okamoto, N. Terasaka*. Artificial initiation codons and engineered initiator tRNAs enable N-terminal noncanonical amino acid incorporation in intact cell-free translation systems. bioRxiv (2026) 非天然アミノ酸（ncAA）をタンパク質のN末端に導入する技術は、タンパク質内部の配列への影響を最小限に抑えつつ、新たな機能を導入できる手法です。しかし、無細胞翻訳系を用いた高効率な開始コドンncAA導入系では、系からメチオニンまたはメチオニルtRNA合成酵素を除去することで天然のメチオニン翻訳経路を抑制しているため、内部にメチオニン残基を含むタンパク質への適用が制限されます。 本研究では、特定の因子を除かな

以下の二つのプレプリントをbioRxivに公開しました。東京大学大学院工学系研究科の古林太郎研究員との共同研究になります。 Boosted cell-free gene expression for robust signal readout from a single-copy DNA template in microdroplets https://www.biorxiv.org/content/10.64898/2026.02.22.707295v1 Efficient cell-free evolution of RNA polymerases by droplet microfluidics https://www.biorxiv.org/content/10.64898/2026.02.23.707346v1 従来の分子進化は、DNAクローニングや細胞の形質転換、培養工程に依存しており、スピードとスループットに制約がありました。 本研究では、数百fMのDNAからのタンパク質発現が可能なboosted PURE系を構築し、ピコリットル

学術変革領域研究（B）生命-非生命転移が開催する国際シンポジウム（3月18日,19日　東京大学子アバIIキャンパス）にて、ウイルス模倣ヌクレオカプシドの実験室内進化について寺坂特任准教授発表いたします！ 以下の論文・プレプリントの内容を発表予定です。 D. Kanayama, N. Terasaka† , K. Kato, S. Okazaki, H. Suga†. A Nonviral Neo-Nucleocapsid for Cell-Specific RNA Delivery Developed by Pseudo-Cyclic Peptide Grafting and Directed Evolution. Angew. Chem., Int. Ed. Engl. (2025), †Co-corresponding author K. Tajima, Y. Sakai, N. Terasaka . Cargo-directed assembly of nonviral nucleocapsid with controlled size

日本農芸化学会2026年度大会（同志社大学）のシンポジウム「ペプチド進化工学の未来 ～mRNA display、創薬、マイクロデバイス、発酵生産～」3月11日15時15分）にて、マイクロ流路を用いた無細胞タンパク質進化システムについて寺坂特任准教授発表いたします！是非お越しください！ https://jsbba2.bioweb.ne.jp/jsbba2026/index.php?btn2_move=on&type=4&code=3SY08B6 寺坂特任准教授はmRNA display経験者の視点から、現在取り組んでいる無細胞タンパク質進化系のメリット・デメリットについて発表する予定です。

以下の二つのプレプリントをbioRxivに公開しました。 An engineered closed-shell, two-component, 480-subunit nucleocapsid https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2025.10.22.683813v1 Cargo-directed assembly of nonviral nucleocapsid with controlled size https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2025.11.06.684264v1

寺坂特任准教授が共同責任著者である論文がAngewandte Chemie誌に掲載されました。 https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/ange.202519027?af=R 本論文では、共有結合性タグであるDogTag/Catcherを利用することで、人工ヌクレオカプシド(NC-4)の外表面に機能性タンパク質を提示するシステム（DogNC-4）を設計しました。 さらに、ランダム変異ライブラリーからの分子進化実験によって、粒子形成効率の向上に成功しました（DogNC-4.1)。 DogNC-4.1の表面に 肝細胞増殖因子受容体(MET)に結合する環状ペプチド配列を導入し、受容体を介して細胞にエンドサイトーシスされるヌクレオカプシドの人工進化に成功しました。この研究成果は、非ウイルス性タンパク質カプセルによるRNAデリバリー技術への応用が期待されます。 本研究は東京科学大学総合研究院の加藤一希先生との共同研究です。

野地真広博士が博士研究員として着任しました！

古川晴之博士が博士研究員として着任しました！

博士課程1年のZhengyang Luoさんが、Science Tokyo SPRING 総合知と癒しの次世代フロントランナー育成プログラムに採択されました！ https://tokyotech-crossborder.gakumu.titech.ac.jp/

生命理工学院ELSIコース 修士課程のCao Wenkeさん、生命理工学院生命理工コース博士課程のLuo Zhengyang さんが研究室に加わりました。ELSIの松浦教授との共同指導となります。

博士課程1年のLi Hualinさんが、Tokyo Tech 総合知と癒しの次世代フロントランナー育成プログラム (Tokyo Tech SPRING)に採択されました！

生命の起原および進化学会が刊行する学術雑誌「Viva Origino」52巻1号に、寺坂が執筆したミニレビュー「実験室内進化で迫る原始ウイルス形成過程」が掲載されました。オープンアクセスなので、どなたでもご覧いただけます。...